- •Введение
- •Эшерихиоз
- •Сальмонеллез
- •Протейная инфекция
- •Клебсиеллез
- •Дизентерия свиней
- •1. Препараты, применяемые при дизентерии
- •Стрептококкозы
- •Цервикальный лимфаденит.
- •Мыт лошадей
- •Псевдомоноз
- •Анаэробная энтеротоксемия
- •Листериоз
- •Лептоспироз
- •Актинобациллезная плевропневмония поросят
- •Гемофилезный полисерозит поросят
- •Бордетеллез поросят
- •Хламидиоз
- •Энзоотическая пневмония свиней
- •Заразный насморк крольчат
- •Респираторно-синцитиальная инфекция
- •Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота
- •Аденовирусная инфекция крупного рогатого скота
- •Парвовирусная инфекция
- •Вирусная диарея
- •Ротавирусная диарея телят
- •Коронавирусная инфекция телят
- •Ротавирусный энтерит поросят
- •Вирусный гастроэнтерит свиней
- •Энтеровирусный энцефаломиелит свиней (болезнь тешена)
- •Болезнь ауески
- •Грипп поросят
- •Грипп жеребят
- •Контагиозный пустулезный дерматит овец и коз
- •Миксоматоз кроликов
- •Особенности развития инфекционных болезней в производственных условиях
- •3. Схема этиопатогенеза смешанных кишечных инфекционных заболеваний молодняка сельскохозяйственных животных
- •Общие принципы комплексного лечения респираторных инфекционных болезней
- •Общие принципы комплексного лечения желудочно-кишечных инфекционных болезней
- •Оглавление
Заразный насморк крольчат
Заразный насморк крольчат (Phinitis contagiosa parvoram cuniculorum), инфекционный ринит, злокачественный насморк — инфекционная болезнь, характеризующаяся воспалением слизистых оболочек верхних дыхательных путей, реже — бронхов и легких.
Заболевание регистрируют повсеместно как в производственных условиях (на кроликофермах), так и при содержании в частном секторе. Отмечают спорадические, реже энзоотические вспышки заразного насморка у молодняка кроликов, непосредственно связанные с ухудшением условий содержания, сыростью и сквозняками.
Возбудитель. Болезнь полиэтиологична. В большинстве случаев у больных из носовой слизи и экссудата выделяют Bordetella bronchiseptica, Pasteurella multocida, реже — Staphylococcus aureus, Staphylococcus intermedius. Существует мнение, что пусковым механизмом инфекционного ринита являются ортомиксо- и пара-миксовирусы. Предрасполагает их адсорбции и размножению физико-химическое раздражение верхних дыхательных путей внешними факторами (повышенная влажность при пониженной температуре воздуха, увеличение концентрации аммиака и сероводорода в воздухе помещения для содержания кроликов) и, как следствие, снижение резистентности организма и местного иммунитета верхних дыхательных путей.
Возбудителя В. bronchiseptica выделяли более чем в 50 % случаев заразного насморка у крольчат, причем часто и в разных районах в ассоциации с пастереллами или стафилококками. В. bronchiseptica относится к семейству Bracellaceae и является возбудителем бордетеллеза поросят. P. multocida — типичный представитель семейства Pasteurellaceae, возбудитель пастереллеза. (Характеристики данных бактерий представлены в соответствующих главах).
Staphylococcus aureus и Staphylococcus intermedius — грамполо-жительные кокки размером 0,5—1,0 мкм, располагающиеся в мазках преимущественно цепочками и гроздьями, не образующие спор. Факультативные анаэробы. Хорошо растут на мясопептон-ном, молочно-солевом и желточно-солевом агаре и на других твердых питательных средах. Вызывают помутнение МПБ, а через 4—5 дней — просветление среды, образование пристеночного кольца и осадка. На плотных питательных средах образуют круглые, выпуклые, гладкие, непрозрачные, блестящие колонии серо-белого цвета с желтоватым оттенком до 7 мм в диаметре. Некоторые штаммы образуют капсулу или псевдокапсулу и формируют более мелкие колонии. Большинство штаммов золотистого и белого стафилококков гноеродны, выделяют альфа- или бета-гемолизин, сбраживают с образованием кислоты лактозу и маннит, способны продуцировать коагулазу и некротоксин.
Сохранность стафилококков во внешней среде высокая. В пыли они выживают несколько месяцев, прямые солнечные лучи убивают возбудителя за 3—5 ч; 1%-ный раствор формалина инак-тивирует стафилококки за 24 ч, 3%-ный раствор — за 1 ч; 1%-ный раствор карболовой кислоты губителен для стафилококков в течение 15—30 мин; 0,5%-ный раствор сулемы —за 1ч; 2%-ный натрия гидроксид — за 1 ч; 5%-ный хлорамин — за 5 мин. Литературные данные отмечают высокую чувствительность St. aureus, St. intermedius к генцианвиолету (в разведении 1: 25 000 убивает возбудителей в течение 10 мин), а также к диоксидину, хлоргексиди-ну. В молоке стафилококки погибают при 70 °С за 1 ч, при 85 °С за 30 мин, при 100°С — мгновенно.
Эпизоотологические данные. Источник возбудителя инфекции — больные кролики, выделяющие микроорганизмы с экссудатом и носовой слизью при чихании. Стафилококки — естественные микроорганизмы дыхательных путей и кожи многих животных и человека. Источниками В. bronchisptica и P. multocida могут стать больные бордетеллезом и пастереллезом поросята, щенки, а также животные-микробоносители при совместном содержании.
Заражение происходит аэрогенным путем. Факторами передачи являются капли при чихании, пыль, воздух, а также кормушки, поилки, инвентарь. Отмечается стационарность инфекции, обусловленная наличием персистентного носительства и резервуаров инфекции (крысы). Учащение случаев заболевания приходится на весенний и осенний периоды, что связано с колебаниями температур, сыростью, снижением резистентности организма.
Болеют преимущественно крольчата с 2-недельного до 3-ме-сячного возраста. Наиболее тяжело — послеотъемный молодняк, нередко с вовлечением в процесс нижних дыхательных путей и летальным исходом.
Патогенез. Химико-физические раздражения слизистой носовой полости приводят к снижению лизоцимной активности слизи, фагоцитарной активности барьерного слоя, снижению барьерной функции верхних дыхательных путей. В таких условиях беспрепятственно ассимилируются даже слабо патогенные сапрофитные возбудители. Их размножение и биологическая деятельность приводят к экссудативным и гноеродным процессам.
Клинические признаки. Инкубационный период длится от 3 до 17 дней и зависит от конкретного возбудителя, его вирулентности, а также от дозы попадания и иммунного статуса восприимчивого организма.
Заразный насморк проявляется гиперемией конъюнктивы, воспалением слизистой носовой полости. Острый катар сменяется серозным, а затем и гнойно-некротическим воспалением. Развивается выраженная инспираторная одышка, в тяжелых случаях при остром течении — цианоз слизистых и другие признаки удушья.
Истечения из носовых отверстий вначале слизистые, серозно-слизистые, а затем — слизисто-гнойные и серозно-гнойные. Скопление экссудата в носовой полости также затрудняет дыхание, кролики чихают, трут нос лапками. Шерсть на морде и передних лапах склеена.
С развитием патологического процесса развивается лихорадка (температура тела повышается до 40,5—41 °С), угнетение, анорек-сия. Вовлечение в процесс бронхов и легких приводит к усилению одышки, появлению хрипов в грудной клетке, реже развивается жесткий, глубокий кашель. В таких случаях прогноз неблагоприятный.
При подостром течении клиническая картина менее выражена, гнойный ринит развивается медленнее, однако вовлечение в патологический процесс нижних дыхательных путей приводит к обострению болезни.
Нередко отмечается и хроническое течение, ринит при котором может продолжаться месяцами. Больные кролики заметно отстают в росте и развитии, появляются медленно нарастающие слабость, угнетение аппетита, истощение.
Такие животные являются источниками возбудителя инфекции и служат повышению его вирулентных свойств.
Патологоанатомические изменения. Отмечают гиперемию и набухание слизистой верхних дыхательных путей, участки некроза мерцательного эпителия, скопление серозного, слизисто-гнойно-го или гнойного секрета. Характерны патоморфологические изменения — инъекция сосудов бронхов, увеличение заглоточных и бронхиальных лимфоузлов, отек и кровоизлияния в легких с очагами некроза и абсцессами. Нередко развивается зернистая дистрофия печени.
Диагноз. При постановке диагноза учитывают в первую очередь эпизоотологические данные и клинические признаки. Для бактериологической диагностики в лабораторию отправляют носовые истечения и экссудат от живых кроликов и трупы или вынужденно убитых крольчат, которым не применяли антибиотики.
Бактериологическое исследование проводят по общепринятым методам: окрашивание мазков-отпечатков по Граму; посев патологического материала на различные селективные и дифференциально-диагностические среды; идентификация выделенных культур по морфологическим, тинкториальным, биохимическим и серологическим свойствам; проверка выделенных культур на вирулентность.
Дифференциальный диагноз. Исключают миксо-матоз, клебсиеллез, сальмонеллез.
Лечение. Больных крольчат помещают в клетку с утепленным гнездом, улучшают рацион, профилактируют сквозняки и стрессовые воздействия (шум, повышенная влажность или загазованность в помещении и т. д.).
Для лечения крольчат, больных инфекционным ринитом, применяют растворы 0,1%-ного фурацилина и 1%-ного диоксидина, по несколько капель которых закапывают в каждую ноздрю. Кроме того, для эффективного лечения необходимо использование антибиотиков, к которым чувствителен возбудитель: местно в виде капель в носовую полость и резорбтивно.
Хороший результат получен от внутримышечного применения инициллина в дозе 2—3 мг послеотьемному молодняку и тиамути-на 100 в дозе 3—5 мг 1 раз в сутки; подкожно немицетина — 2 раза в день по 0,2 см3 и тилмикозина 1 раз в день подкожно в дозе 5— 7 мг крольчатам-отьемышам. Высокоэффективно назначение внутрь с водой тромексина, зинаприма по 0,5 г и трисульфона по 5—8 г на 1 л воды. Рекомендуется больным кроликам ежедневно с кормом давать хвою лесную, кормовые дрожжи, тривитамин по 15—20 капель, вместо воды — молоко.
Истощенных животных с признаками выраженных бронхита и пневмонии лечить нецелесообразно.
Профилактика и меры борьбы. Важное профилактическое значение имеют оптимальные условия содержания и полноценное кормление. Необходимо строго соблюдать правила ветеринарной санитарии: профилактические дезинфекции, недопущение попадания на ферму бродячих собак, посторонних лиц; оборудование дезковриков и дезбарьеров; систематические дератизации и дезинсекции.
В частном секторе недопустимо содержание в одной постройке кроликов и свиней, при взятии крольчат на руки и временной пересадке необходима предварительная санитарная обработка лотка и рук.
Важно контролировать полноценность и сбалансированность рационов, особенно по переваримому протеину, витаминам, макро- и микроэлементам, а также соблюдение зоогигиенических требований содержания (относительная влажность не более 75 %, скорость движения воздуха в производственном помещении 0,3— 0,6 м/с в переходное время года и т. д.). Клетки с подсосными крольчатами в обязательном порядке снабжают логовами, где крольчиха делает гнездо из собственного пуха и сена.
При возникновении болезни на неблагополучное хозяйство накладывают ограничения, которые снимают через 20 дней после последнего случая болезни и проведения заключительной дезинфекции. Больных изолируют или убивают на мясо (выпуск тушки допустим в проваренном виде), пораженные органы утилизируют. Проводят вынужденную дезинфекцию помещений, клеток, инвентаря, поилок, кормушек, тележек 3 %-ным раствором формалина или 2 %-ным горячим раствором натрия гидроксида.
Животным, находившимся в прямом контакте с больными, с водой или молоком задают сульфадиметоксин по 7— 10 г на гнездо 1 раз в день, тривитамин. Проводят вьшужденную дезинфекцию помещений, клеток, инвентаря, поилок, кормушек, тележек 3%-ным раствором формалина или 2%-ным горячим раствором натрия гидроксида.
Животным, находившимся в. прямом контакте с больными, с водой или молоком задают сульфадиметоксин по 7—10 г на гнездо 1 раз в день, травитамин. Проводят дополнительный обогрев, инфракрасное и ультрафиолетовое облучение, в клетках размещают хвою сосны лесной или других пород, в рацион вводят пелрушку, капустный лист, сухие листья мать-и-мачехи.
ВИРУСНЫЕ БОЛЕЗНИ
ПАРАГРИПП РОГАТОГО СКОТА
Парагрипп рогатого скота, (Paragrippus bovum), парагрипп крупного рогатого скота, парагрипп-3 — острая контагиозная вирусная болезнь, преимущественно телят, характеризующаяся поражением органов дыхания. На основании тропизма вируса к респираторному тракту, патогенеза, клинической картины и патоло-гоанатомических изменений парагрипп относится к группе респираторных инфекций.
Большую работу по изучению этиологии болезни провели Вальдман и Кобе (1935), Ламонт и Кер (1955), В. Куличкин (1951). Рейзенгер с соавт. (1959) доказали патогенную роль вируса парагриппа в возникновении транспортной лихорадки телят. В дальнейшем парагрипп-3 стали диагностировать в различных регионах мира.
Возбудитель. Болезнь вызывает РНК-содержащий вирус из рода парамиксвирусов семейства Paramyxoviridae. Он обладает выраженной антигенной активностью и имеет два типа антигенов, различающихся по свойствам и специфичности. Все штаммы, выделенные в разных странах от телят и взрослых животных, по антигенной структуре идентичны и соответствуют прототипному штамму SF-4. Вирусы парагриппа-3 крупного рогатого скота и человека сходны между собой.
Вирус обладает гемадсорбирующими и гемагглютинирующими свойствами, однако спектр гемагглютинирующей активности у разных штаммов неодинаков; агглютинирует эритроциты морской свинки, кролика, свиньи, обезьяны, коровы, мышей, голубя, буйвола, овцы, козы.
Размер вириона 150—250 нм. Вирус репродуцируется в культуре ткани почки, легкого, тонкого кишечника и тестикул бычка, а также на куриных эмбрионах и перевиваемых линиях культур клеток: Hela, Нер-2, МДВК, Vero и др. Все штаммы вызывают сходное цитопатогенное действие, характеризующееся образованием синцития и вакуолей. Доказана возможность адсорбции и персис-тентности вируса на бактериях (Staphylococcus, Bacillus subtillis).
Вирус парагриппа постоянно обнаруживают в носовой слизи и тканях легких через 2—17 дней после заражения.
Вирус парагриппа сохраняется при температуре 4 "С до 4—5 мес, при 37 °С до 5 ч, при 56—60 °С 30 мин. Ультрафиолетовые лучи на него действуют губительно, он быстро инактивируется в кислой среде, но хорошо сохраняется при рН 6,8—7,5. Под воздействием жирорастворителей (хлороформа, эфира) теряет инфекционную активность. Парамиксовирусы быстро инактивиру-ются при обработке 0,5%-ным раствором формалина, 1%-ным раствором бета-пропионлактона.
Эпизоотологические данные. Парагриппом-3 болеет крупный рогатый скот, редко молодняк овец, не исключена возможность резервации вируса в организме свиней и собак.
На течение инфекции существенно влияют возраст, иммунное состояние животных, вирулентность вируса и другие факторы. Более восприимчивы телята в возрасте до 5—6 мес, менее — ягнята. Источник возбудителя инфекции — больные животные и вирусо-носители. Вирус выделяется из экскретов респираторного тракта больных животных через 1—9 дней, из гортани и трахеи —через 3—10, из легких — через 1—17 дней, из миндалин и бронхиальных лимфоузлов — через 2—4 дня, из селезенки, печени, сердца — через 1—2 дня. Кроме того, вирус содержится в тестикулах телят и сперме быков. Известны случаи выделения вируса с молоком, вагинальными выделениями и фекалиями. Заражение животных происходит воздушно-капельным, контактным путями и перо-рально.
Парагриппозное заболевание характеризуется высокой конта-гиозностью, поражением 90—100% животных, однако в клинической форме чаще проявляется небольшими вспышками и редко принимает характер эпизоотии. Болезнь возникает во все времена года, но чаще в осенне-зимний период. Его распространению способствуют транспортировки и скученность животных. Парагрип-позная инфекция в хозяйстве может протекать и спорадически, без эпизоотических вспышек, но при ней характерно присутствие респираторного синдрома.
При завозе молодняка из разных хозяйств, имеющего различную резистентность и иммунный статус, создаются условия для постоянной циркуляции возбудителя в стаде, его пассирования и повышения вирулентности вируса. Кроме того, среди молодняка, доставленного на доращивание, возможны смешанные инфекции. Специфические антитела в сыворотках крови обнаруживают у 44—86 % телят, у 23,5—86 % овец, а также у коз и верблюдов. Имеются сообщения о выделении вируса парагриппа-3 от буйволов, лошадей, собак и крыс. У стельных коров болезнь не сопровождается симптомами респираторного заболевания, но может привести к внутриутробному заражению плода, абортам или рождению нежизнеспособных телят.
Прямые и непрямые контакты между крупным рогатым скотом и овцами в одном хозяйстве способствуют циркуляции вирусов парагриппа-3 и диареи.
Патогенез. При заражении животных воздушно-капельным путем вирус внедряется в клетки слизистой верхних дыхательных путей, репродуцируется там, вызывая воспалительный процесс, деструкцию клеток эпителия и нередко отек гортани.
Размножившийся вирус и продукты распада клеток частично проникают в кровь, способствуя общей интоксикации организма. В крови он частично нейтрализуется присутствующими в ней ингибиторами и появляющимися антителами, а также выделяется через почки. Нарушение эпителиальной выстилки дыхательных путей, а также снижение фагоцитарной активности лейкоцитов под действием вируса парагриппа способствуют активизации бактериальной флоры и возникновению осложнений.
Клинические признаки. Инкубационный период длится 1—2 дня. Клиническое проявление и течение болезни зависят от вирулентности штамма вируса, возраста, иммунного состояния животных, сопутствующих секундарных инфекций, факторов, снижающих резистентность молодняка. Чаще болеет молодняк, переболевший диспепсией новорожденных. Уровень колостральных антител у молодняка на первом этапе зависит от количества их в молозиве матери. К 25—30-му дню жизни титр специфических антител снижается в среднем до 1:175,5. Молодняк с таким уровнем антител не защищен против вируса и поэтому клинически или скрыто переболевает парагриппом.
Болезнь в основном протекает остро, подостро и хронически. Динамика проявления болезни — от легких ринитов или бронхитов до тяжелой бронхопневмонии.
У телят в первые дни болезни повышается температура тела до 42 °С (максимально на 3—4-й день), появляются серозные и сероз-но-слизистые выделения из носовой полости, которые могут переходить в слизисто-гнойные (рис. 13). Отмечают сухой кашель, одышку, угнетение, снижение аппетита, учащение пульса и дыхания, которое становится поверхностным, появляются хрипы, продолжающиеся 12—14 дней. У некоторых животных отмечают серозный конъюнктивит и слюнотечение, а иногда образование эрозий и язв в ротовой полости. Животные выздоравливают в течение 2—3 нед.
У телят при подостром и хроническом течени-я х болезни отмечают отставание в росте и развитии, слизисто-гнойные выделения из носа и глаз, признаки пневмонии и плеврита, иногда — диарею. Болезнь может протекать до 3—4 нед.
У ягнят болезнь характеризуется повышением температуры до 41,5—42 °С, конъюнктивитом и сухим кашлем, аппетит сохранен. Редко болезнь проявляется и у жеребят. Отмечают повышение температуры, отказ от корма, выделение слизисто-гнойного экссудата из носовой полости и конъюнктивиты.
Патологоанатомические изменения. У павших или вынужденно убитых телят отмечают слизисто-гнойные выделения из носа и глаз, в трахее, бронхах и бронхиолах обнаруживают гиперемию слизистой оболочки и слизисто-гнойный экссудат, в легких — участки уплотнения красного цвета, окруженные зоной эмфиземы, плеврит.
Пораженные участки легких — от сине-красного до серого цвета, увеличены, уплотнены, поверхность разреза влажная, при надавливании отделяется большое количество мутной жидкости. Между долями легкого иногда отмечают фибринозные тяжи, гипертрофию или некроз заглоточных, шейных, бронхиальных и средостенных лимфатических узлов, иногда — энтерит, перикардит. Средостенные лимфатические узлы отечны и пронизаны кровоизлияниями. Также точечные и пятнистые кровоизлияния находят в тимусе, на плевре, брюшине, эпикарде. На слизистой оболочке сычуга к тому же отмечают эрозии и язвы. Слизистая оболочка кишечника отекшая, с кровоизлияниями. В брюшной и грудной полостях скопление серозного экссудата.
Гистологические изменения характеризуются интерстициаль-ной пневмонией с вовлечением в патологический процесс бронхиального и альвеолярного эпителиев, утолщением эпителиального слоя бронхиол, просветы которых часто закупорены некротическими массами. В эпителиальных клетках бронхиол и альвеол присутствуют эозинофильные цитоплазматические и внутриядерные включения, которые могут служить характерным признаком парагриппозной инфекции.
Диагноз. Постановка диагноза основана на анализе клинико-эпизоотологических данных и патологоанатомических изменений, лабораторных исследований.
Лабораторная диагностика включает:
вирусологические исследования — выявление вирусного антигена в пробах патологического материала и секретах полости носа методом иммунофлюоресценции, изоляцию вируса в культуре клеток, индикацию его по цитопатогенному действию (вакуолизация культур клеток легких эмбриона коровы, тестикул бычка и т. д., а также симпластообразование) и идентификацию в реакции торможения гемадсорбции или реакции задержки гемагглю-тинации;
серологическую ретроспективную диагностику — исследование парных проб сыворотки крови, полученных в начале болезни и через 2—3 нед, в реакциях гемагглютинации, торможения гемаг-глютинации, нейтрализации, связывания комплемента, полиме-разной цепной реакции, ELISA. Выделение вируса, обнаружение специфического антигена или повышение титра антител в 4 раза и более в парных пробах сыворотки крови является критерием для постановки диагноза.
Дифференциальный диагноз. Необходимо исключить аденовирусную и парвовирусную бронхопневмонию, респи-раторно-синцитиальную инфекцию, инфекционный ринотрахеит, вирусную диарею и пневмонии, вызванные агентами группы ор-нитозо-лимфогранулемы-трахомы, а также хламидийную пневмонию.
Лечение. Применяют поливалентную сыворотку против инфекционного ринотрахеита, парагриппа-3, вирусной диареи и аденовирусной инфекции крупного рогатого скота. Большое значение в системе лечебных мероприятий при парагриппе крупного рогатого скота имеют борьба с секундарной инфекцией и повышение неспецифической резистентности больных животных.
Болгарскими учеными были получены полиглобулиновый препарат миксоглобулин-70 и поливалентная гипериммунная сыворотка, которые при интратрахеальном введении давали высокий профилактический и терапевтический эффект. Применение бивалентной (против парагриппозной и аденовирусной инфекций) и трехвалентной (против вирусов парагриппа, инфекционного ринотрахеита и аденовирусов) сывороток снижало заболеваемость телят в 4—5 раз.
Эффективно одновременное введение неспецифического гамма-глобулина в дозе 1—2 см3/кг массы с пенициллином и стрептомицином в дозах 4000—6000 ЕД/кг или окситетрациклином в дозе 20 мг/кг массы животного и витамина А.
Е. В. Андреев, М. Д. Бакуменко, А. К. Панасенко и другие испытали лечебное действие сыворотки крови животных-реконва-лесцентов и получили положительные результаты. Перед использованием к сыворотке добавляли 10 % глицерина к объему и распыляли с помощью струйных аэрозольных генераторов, которые устанавливали в животноводческих помещениях из расчета один САГ-1 на 400—500 м3 помещения. Это позволило животным вдыхать в форме аэрозоля до 0,4 см3 биопрепарата в течение 45— 60 мин.
Эффективно применение крови реконвалесцентов из расчета 2 мл/кг двукратно подкожно или внутримышечно с интервалом 48 ч; энрофлоксацина 5 мг/кг внутримышечно в течение 3 дней; иммунолактосыворотки в титрах 1: 64—1 :128, которую используют аэрозольно из расчета 5—15 мл/м3 с добавлением 5—10 % глицерина.
При вспышках острых респираторных болезней рекомендуется животных обрабатывать через 2—3 дня с лечебно-профилактической целью аэрозолями скипидара и хлорскипидара. Скипидар распыляют из расчета 0,5 см3 на 1 м3 воздуха помещения с помощью аэрозольных насадок ПВАН-4, ТАН и компрессора, аэрозольных генераторов АГ-Л6, САГ-1 и др. При этом насадка должна быть отрегулирована так, чтобы расход жидкости не превышал 15—20 мл/мин, а компрессор обеспечивал давление воздуха не менее 3—4атм. Равномерное распределение аэрозолей достигается путем распыления препарата из нескольких точек помещения. Из одной точки распыляют не более 500 м3.
Аэрозоли хлорскипидара получают путем смешивания в открытых металлических емкостях хлорной извести, содержащей максимальное количество (35—37 %) активного хлора, со скипидаром в отношении 4:1. Для начала реакции в приготовленную смесь вливают немного воды. На 1 м3 воздуха расходуют 2 г хлорной извести и 0,5 см3 скипидара медицинского. Во время обработки животных аэрозолями хлорскипидара вентиляцию не выключают. В производственных опытах лечебно-профилактическая эффективность аэрозолей хлорскипидара составила 83,9 %, скипидара — 90,9 %.
Положительные результаты получены при использовании аэрозолей йодистого алюминия из расчета на 1 м3 воздуха помещения 1,6 г кристаллического йода и 0,2 г алюминиевой пудры при экспозиции 35 мин. С профилактической целью рекомендуется на 1 м3 воздуха помещения расходовать кристаллического йода 0,9 г и алюминиевой пудры 0,1 г при экспозиции 20 мин.
По данным А. В. Драгомира, при острых респираторных болезнях телят эффективны аэрозоли тимола в дозе 0,25—0,5 г на животное. Тимол растворяют в спирте-ректификате в соотношении 1:16 и затем добавляют такой же объем глицерина. Полученную смесь распыляют 1 раз в сутки в течение 2—3 дней.
Можно распылять 40%-ный раствор молочной кислоты в дозе 0,5 мл на 1 м3 помещения. Для повышения устойчивости аэрозоля к раствору молочной кислоты добавляют 5—10 % глицерина. Обработку телят проводят 3 дня.
Для подавления секундарной инфекции больным животным назначают сульфаниламидные и антибактериальные препараты: ;ульфадиметоксин, сульфадимезин, сульфантрол, эритромицин, полимиксин М, тетрациклин, окситетрациклин, хлортетрацик-лин, нистатин, сульфетрим, сульфамин 200 и другие в терапевтических дозах. При использовании антибиотиков предварительно устанавливают чувствительность к ним условно-патогенной микрофлоры.
Больным животным целесообразно внутривенно вводить растворы глюкозы. При ослаблении сердечной деятельности назначают камфорное масло (подкожно), настойку валерианы, пустырника, отвары корня и корневища валерианы (перорально) и другие сердечные вещества в терапевтических дозах. В рацион больных животных включают высококалорийные корма, поливитамины и микроэлементы.
Отдельные авторы рекомендуют при бактериальных осложнениях парагриппа применять 10%-ный раствор сульфадимезина (на 2%-ном растворе натрия гидрокарбоната) в дозе 0,05 г сухого вещества на 1 кг массы животного 1 раз в сутки в течение 3—4 дней. При осложнениях бактериальной микрофлорой хорошие результаты получены при комбинированном применении антибиотиков, сульфаниламидных препаратов и общетонизирующих средств. Для аэрозольной обработки телят используют на 1 м3 камеры следующую смесь: неомицин, мономицин и пенициллин со стрептомицином — 180 000—250 000 ЕД, хлористый аммоний — 1—1,5 г, глицерин — 40—60 г, 0,5 %-ный раствор новокаина — 60 мл. После распыления лечебного раствора животных выдерживают в камере 1 ч. Лечение проводят 1 раз в день в течение 6—8 дней.
Успешно применение рибамидила, который близок к природным рибонуклеотидам, а по действию аналогичен импортному ри-бовирину. Препарат применяют в дозе 0,05 г/кг массы животного 4 раза в день перорально в течение 5 дней.
Иммунитет. Переболевшие животные устойчивы к повторному заражению в течение 5—6 мес, сыворотка их крови содержит специфические антитела. Как и при других вирусных респираторных инфекциях крупного рогатого скота, наиболее важный факт, влияющий на устойчивость к заражению, — местный секреторный иммунитет, обусловленный наличием интерферона и специфических секреторных антител в секретах респираторного тракта.
Телята, получившие молозиво от коров-матерей с высоким уровнем антител к вирусу парагриппа-3, имеют пассивный колос-тральный иммунитет, который необходимо учитывать при вакцинации телят, так как он препятствует активной выработке антител в связи с блокированием вакцинного штамма. Поэтому целесообразно прививать телят интраназально. Однократная вакцинация телят с наличием колостральных антител не вызывает увеличение титров, которое происходит только после ревакцинации.
В настоящее время для специфической профилактики парагриппа применяют живую вакцину из овечьего штамма «Михай-ловград»; вакцину из аттенуированных штаммов парагриппа, вирусной диареи и инактивированных пастерелл; бивалентную вакцину против парагриппа и аденовирусной инфекции; масляно-адъювантную вакцину против респираторно-синцитиальной инфекции, парагриппа и микоплазмоза.
В нашей стране применяют также живые вакцины против парагриппа и инфекционного ринотрахеита «Бивак», против парагриппа, инфекционного ринотрахеита и вирусной диареи «Три-вак», моновалентную против парагриппа «Паравак» и вакцину против инфекционного ринотрахеита, парагриппа, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной инфекции, рота- и коронави-русной инфекции«Комбовак».
Наиболее эффективны при парагриппе живые вакцины, однако они могут вызывать побочные явления (иммунодепрессию). Разработана коммерческая ассоциированная инактивированная вакцина из вирусов инфекционного ринотрахеита, вирусной диареи и парагриппа — vira Shield-4TM.
Профилактика и меры борьбы. В целях профилактики болезни особое внимание уделяют созданию оптимальных условий содержания и кормления молодняка животных. Особенно эффективна дезинфекция помещений с использованием хлорамина, скипидара, йода и других дезинфектантов в общепринятых концентрациях в присутствии животных в первую неделю после комплектования групп. Перед комплектованием групп телят необходимо обработать транквилизаторами (аминазин, резерпин, триоксазин и др.). Для подавления условно-патогенной микрофлоры внутримышечно или перорально вводят антибактериальные препараты.
При поступлении в хозяйство телятам инъецируют подкожно или внутримышечно сыворотки реконвалесцентов 2—3 раза с интервалом в 10 дней или аэрозольно из расчета 5 мл/м3 трехкратно с интервалом 15—20 дней.
При возникновении парагриппа хозяйство объявляют неблагополучным и вводят ограничения. Больных животных изолируют в отдельные секции и лечат, находившихся в прямом контакте с больными обрабатывают сывороткой, остальных вакцинируют. Однако одних вакцинаций недостаточно для предотвращения болезни, особенно в неблагополучных хозяйствах, и сама иммунизация может быть провоцирующим фактором. При создании групп животных успеху вакцинации могут препятствовать следующие факторы:
развитие респираторных болезней происходит очень быстро после перегруппировки животных, в то время как поствакцинальный иммунитет формируется через 2—3 нед;
вакцинируют животных в состоянии иммунодепрессии, вызванной перегруппировкой;
вакцинные штаммы вирусов нейтрализуются имеющимися ко-лостральными антителами.
Все это необходимо учитывать при разработке и планировании противоэпизоотических мероприятий.
В освободившихся помещениях (секциях) до механической очистки проводят дезинфекцию. В качестве дезинфектантов применяют растворы лизола, натрия гидроксида, формальдегида, кальция гипохлорида в общепринятых концентрациях.
По условиям ограничений запрещают: ввоз в хозяйство (ферму) и вывоз животных в другие хозяйства, перегруппировку неблагополучного поголовья, а также посещение неблагополучных ферм лицами, не связанными с обслуживанием животных. Разрешается вывозить на специально оборудованном транспорте животных на мясокомбинат для убоя. Мясо убитых животных после созревания и при отсутствии в нем дегенеративных изменений выпускают без ограничений. При обнаружении воспалительных и некротических очагов на слизистой носовой полости, трахеи, легких, желудочно-кишечного тракта эти органы подвергают технической утилизации.
Хозяйство объявляют благополучным по парагриппу крупного рогатого скота и снимают ограничения через 14 дней после последнего случая выздоровления или убоя больного животного. Перед снятием ограничений с неблагополучного хозяйства (фермы) помещения, где находились больные телята (ягнята), подвергают заключительной дезинфекции.