1.4. Обработка операционного поля

Обработка операционного поля проводится в 2 этапа. I этап — это гигиеническое обмывание мыльным раствором и водой,

сбривание волос. II этап — непосредственно перед операцией. В настоящее время для обработки применяются йодонат, йодоперин, хлоргексидин биглюконат, 70° спирт, первомур, АХД, бриллиантовый зеленый.

Проводится широкая обработка от центра к периферии 2 раза перед ограничением операционного поля стерильным бельем, непосредственно перед разрезом, перед наложением швов на рану

ипосле наложения швов.

1.5.Методы контроля стерильности

Стерильность медицинских принадлежностей подвергается обязательному контролю. Также проводится контроль пред стерилизационной обработки инструментов.

Бактериологический метод контроля стерильности является наиболее точным. В бактериологической лаборатории после взя­тия мазков со стерильных предметов производят посев на раз­ личные питательные среды, и через 3—5дней определяется бак­териологическая загрязненность. Бактериологическое исследо­ вание стерильности обязательно проводится 1 раз в7—10дней.

При термических способах стерильности проводится непря­мой метод контроля, который позволяет определить величину температуры необходимой для стерилизации.

При автоклавировании в стерилизационную коробку укла­дывают ампулу с порошкообразным веществом, имеющим тем­пературу плавления в пределах 110—120°С. Если после стерили­ ации вещество расплавилось, то медицинские принадлежно­сти в биксе считаются стерильными. Для этого метода исполь­- зуется бензойная кислота (t плавления 120°С), резорцин (t плав­ления 119°С), антипирин (t плавления 110°С), термоиндикатор.

При стерилизации в сухожаровом шкафу используются ве­ щества с более высокими точками плавления: аскорбиновая кис­ лота (t плавления 190 °С), янтарная кислота (t плавления 190°С), тиомочевина (t плавления 180°С), термоиндикатор.

Контроль предстерилизационной обработки проводится после обработки и обсушивания инструментов. Проводится на нали­чие гемоглобина (крови), окислителей, хлорсодержащих средств, моющего средства, ржавчины. Для определения крови приме­няются амидопириновая и азопирамовая пробы. Для определе­ния моющего средства применяются фенолфталеиновая и азо­пирамовая пробы.

Для определения окислителей, хлорсодержащих средств и ржавчины применяется азопирамовая проба.

При положительной пробе раствор, нанесенный на инстру­мент, изменяет окраску. В лечебно-профилактических учреж­дениях ежедневному контролю подвергают1—4%предметов ме­дицинского назначения и с каждой обработанной партии, но не менее3—5единиц. При положительной пробе всю партию изде­лий повторно обрабатывают.

1.6. Профилактика имплантационной инфекции

Профилактика имплантационной инфекции — обеспечение строжайшей стерильности всех искусственных чужеродных ма­териалов и приспособлений с определенной лечебной целью, внедряемых в организм больного. В организм больного могут вво­диться шовный материал, катетеры и дренажи, протезы клапа­нов сердца, сосудов, суставов, различные металлические конст­рукции (скобки, скребки, винты, спицы, пластинки для остеослитеза), спирали, степты, гомофасция, трансплантированные материалы.

Все имплантанты должны быть стерильны. Способ стерили­зации может быть различным и зависит от материала, конст­рукции. Основным, наиболее надежным методом в практике является заводская лучевая стерилизация.

Классический способ стерилизации шелка (метод Кохера) и кетгута (метод Губарева) в настоящее время не применяются из-за сложности и достаточной эффективности. В условиях стаци­онара сейчас стерилизуются только капрон, лавсан и металли­ческие скобки. Стерилизуют их автоклавированием. Весь осталь­ ной шовный материал стерилизуется лучевым заводским спосо­бом, выпускается в ампулах и упаковках. После стерилизации или вскрытия упаковок шовный материал хранится только в 96° этиловом спирте.

Различные протезы и конструкции выпускаются в гермети­ческих стерильных упаковках.

При операции трансплантации источником инплантационной инфекции могут стать аллогенные органы. Стерилизация транс­плантантов невозможна, поэтому при заборе органов соблюда­ется стерильность. После извлечения из организма донора и промывания стерильными растворами орган помещается в

специальный герметичный стерильный контейнер и находится в специальных отсеках до трансплантации.